Die Entwicklung von 181 überzähligen menschlichen Embryonen, darunter sowohl normal als auch abnormal befruchtete, wurde von Tag 2 bis Tag 5, 6 oder 7 in vitro beobachtet. 63/149 (42 %) normal befruchtete Embryonen erreichten am Tag 5 oder 6 das Blastozystenstadium. Die Gesamtzellzahl, die Zahl der Zellen des Trophektoderms (TE) und der inneren Zellmasse (ICM) wurden durch differentielle Markierung der Zellkerne mit polynukleotidspezifischen Fluorochromen analysiert. Die TE-Kerne wurden während der immunchirurgischen Lyse mit einem Fluorochrom markiert, bevor der Embryo fixiert und beide Kernsätze mit einem zweiten Fluorochrom markiert wurden (Handyside und Hunter, 1984, 1986). Neu expandierte, normal befruchtete Blastozysten wiesen am 5. Tag eine Gesamtzahl von 58,3 +/- 8,1 Zellen auf, die am 6. und 7. Tag auf 84,4 +/- 5,7 bzw. 125,5 +/- 19 anstieg. Die Anzahl der TE-Zellen war an den Tagen 5 und 6 ähnlich (37,9 +/- 6,0 bzw. 40,3 +/- 5,0) und verdoppelte sich dann an Tag 7 (80,6 +/- 15,2). Im Gegensatz dazu verdoppelte sich die Zahl der ICM-Zellen zwischen Tag 5 und 6 (20,4 +/- 4,0 bzw. 41,9 +/- 5,0) und blieb an Tag 7 praktisch unverändert (45,6 +/- 10,2). Sowohl in der TE als auch in der ICM kam es zu einem weit verbreiteten Zelltod, der sich an der Fragmentierung der Zellkerne ablesen ließ und an Tag 7 deutlich zunahm. Diese Ergebnisse werden mit der Anzahl der Zellen in morphologisch abnormen Blastozysten und Blastozysten aus abnormal befruchteten Embryonen verglichen. Auch die Zellkerne von arretierten Embryonen wurden untersucht. Die Anzahl der TE- und ICM-Zellen in normal befruchteten Blastozysten scheint derjenigen in der Maus ähnlich zu sein. Anders als bei der Maus ist der Anteil der ICM-Zellen jedoch höher, trotz des Zelltods in beiden Linien.