O padrão ouro para o diagnóstico de alergia alimentar é o desafio alimentar oral (OFC) . No entanto, o OFC requer a ingestão do alimento suspeito e pode causar uma reacção alérgica aguda, que é potencialmente grave . Por este motivo, o OFC precisa ser realizado em um ambiente supervisionado com as instalações e a experiência para tratar reações alérgicas e anafilaxia, caso elas ocorram. A OFC pode causar ansiedade significativa em pacientes, pais e até mesmo na equipe clínica, pois envolve risco considerável. Assim, sempre que possível, o diagnóstico de alergia alimentar é estabelecido por um histórico recente e convincente de uma reacção alérgica mediada por IgE ao alimento culpado, combinado com provas de sensibilização à IgE para o mesmo alimento através de um teste de punção cutânea (SPT) e/ou IgE específico do soro (sIgE) . Os OFC são reservados para os casos em que os resultados de SPT e/ou sIgE são equívocos. Com o aumento da consciência e da prevalência de alergia e sensibilização alimentar, cada vez mais doentes estão a ser testados para alergia alimentar. A ausência de um histórico de exposição oral a alimentos alergênicos, resultando em uma reação alérgica ou na ausência de sintomas clínicos, pode tornar a interpretação dos resultados da SPT e sIgE particularmente desafiadora. Os bebés e crianças pequenas que nunca tiveram certos alimentos alergénicos constituem uma proporção considerável de doentes atendidos em clínicas de alergias e necessitam frequentemente de um OFC para clarificar o seu estado alérgico. Isso resulta em uma demanda crescente no desempenho da OFC. Os serviços de alergia têm dificuldade em responder a esta procura e os doentes podem ter de esperar vários meses antes de lhes ser oferecido um diagnóstico exacto de alergia alimentar ou tolerância alimentar por OFC, o que pode levar a restrições alimentares desnecessárias e a uma ansiedade significativa associada à incerteza do diagnóstico. O OFC é também o padrão ouro para avaliar a resolução da alergia alimentar, para determinar a dose limite e para monitorizar a resposta clínica aos tratamentos imunomoduladores para alergias alimentares. Em estudos de investigação, os doentes alérgicos têm frequentemente de se submeter a OFC repetida para avaliar se houve alguma melhoria clínica.
A BAT, sendo um ensaio funcional, tem o potencial de se assemelhar mais ao fenótipo clínico dos doentes do que os testes de alergia que apenas detectam a presença de IgE específica do alergénio. Em termos simples, a MTD pode ser vista como um OFC num tubo de ensaio, onde em vez de dar o alimento a uma criança pela boca, os basófilos envolvidos em reacções alérgicas agudas são expostos a um extracto alimentar num tubo de ensaio. Apesar da analogia, diferenças entre os dois procedimentos e suas aplicações clínicas podem ser apontadas e aqui se coloca a questão se a BAT pode imitar lealmente a OFC padrão ouro, ou seja, se a BAT pode reproduzir in vitro a reação alérgica que acontece in vivo durante uma OFC positiva.
O teste de ativação de basófilos
A MTD é um ensaio baseado em citometria de fluxo onde a expressão dos marcadores de ativação é medida na superfície dos basófilos após a estimulação com o alérgeno -Fig. 1. Um teste de ativação positiva de basófilos pode ser visto como um substituto in vitro de uma reação alérgica aguda in vivo. Em um estudo de pacientes alérgicos ao veneno do himenóptero, foi observada a up-regulation dos marcadores de ativação de basófilos tanto in vitro após estimulação com jaqueta amarela ou veneno de abelha e ex vivo após um desafio de picada positiva . No mesmo estudo, houve uma concordância geral entre a apresentação clínica (reação sistêmica versus grande reação local) e os resultados da MTD, sugerindo que a MTD é um biomarcador potencial da anafilaxia. Também em pacientes alérgicos a alimentos foi encontrada uma boa concordância entre os resultados da MTD e o resultado da OFC. Em pacientes alérgicos ao alfa-gal com reações alérgicas do tipo imediato atrasadas à carne vermelha, a ativação de basófilos ex vivo no sangue coletado em diferentes pontos de tempo coincidiu com o desenvolvimento de reações alérgicas sistêmicas in vivo durante a OFC . Os resultados deste estudo reforçam o papel dos basófilos nas reações alérgicas mediadas por IgE e anafilaxia induzidas por alimentos.
Diferentes marcadores de superfície celular podem ser usados para identificar os basófilos no sangue total, incluindo IgE, CD123 (com HLA-DR), CCR3 ou CRTH2 (com CD3) ou CD203c .
Em sangue periférico, o IgE é detectado em basófilos, células dendríticas, eosinófilos, monócitos, macrófagos, células B e plaquetas, portanto não é específico para basófilos. O CD123 é a subunidade de baixa afinidade (α) do receptor IL-3. Ele é expresso em altos níveis em células plasmocitóides dendríticas e basófilos e em baixos níveis em monócitos, eosinófilos, células mielóides dendríticas e subgrupos de células progenitoras hematológicas. A coloração adicional com HLA-DR discrimina entre basófilos HLA-DR-negativos e células dendríticas HLA-DR-positivas e monócitos. CCR3 é o receptor de quimiocinas tipo C-C (por exemplo, eotaxina, MCP e RANTES) e é altamente expresso em basófilos e eosinófilos, mas também em células Th1 e Th2. CRTH2 é outro marcador que é expresso por basófilos, eosinófilos e células T, e assim como CCR3, requer um marcador de células T, como o CD3, para distinguir basófilos de células T. CD203c é constitutivamente e especificamente expresso em basófilos e, portanto, pode ser usado como um único marcador de identificação ou em combinação com outros marcadores.
A estimulação com alergênios, a expressão de diferentes proteínas é up-regulada na superfície dos basófilos , ou seja, CD63 e CD203c . A CD63 é uma proteína de membrana lisossomal associada (LAMP), que não é expressa na superfície dos basófilos em repouso, mas apenas na membrana dos grânulos dentro das células . Quando os grânulos se fundem com a membrana plasmática dos basófilos durante a desgranulação, a CD63 torna-se expressa na superfície dos basófilos . O CD203c é uma enzima que cliva as ligações fosfodiéster e fosfosulfato, removendo hidroliticamente os nucleotídeos 5′-nucleotídeos sucessivamente dos oligonucleotídeos 3′-hydroxy-termini. É expressa exclusiva e constitutivamente em baixos níveis na superfície dos basófilos e mastócitos e a sua expressão aumenta com a activação celular. Os marcadores de ativação do basófilo parecem formar dois grupos distintos de marcadores que se atualizam concomitantemente: um incluindo CD63, CD107a e CD107b e outro incluindo CD203c, CD13 e CD164 . CD63 e CD203c são os marcadores de ativação de basofil mais comumente usados.
O procedimento laboratorial da MTD consiste em três estágios: estimulação celular, coloração celular e citometria-Fig. 1. O sangue deve ser processado o mais rápido possível após a coleta de sangue, pois os basófilos perdem sua viabilidade e reatividade ao longo do tempo. No entanto, foram realizados estudos com amostras armazenadas a +4 °C até 24 h. É necessário um pequeno volume de sangue (c.a. 1-2 ml, dependendo do número de condições) para a MTD. Podem ser utilizados extractos de alergénios brutos ou alergénios purificados ou recombinantes para a estimulação celular. Diferentes concentrações de alergênios devem ser usadas, pois a sensibilidade dos basófilos à estimulação alergênica específica varia entre os pacientes.
Os resultados da MTD podem ser determinados em termos de percentagem de basófilos expressando o marcador de ativação definido ou em termos de intensidade de fluorescência média (IFM) calculando o índice de estimulação, ou seja, a razão entre a IFM da condição selecionada e a IFM do controle negativo. A primeira é normalmente usada para o CD63, pois o CD63 não é expresso em células em repouso e sua expressão após a ativação é bimodal. O último é normalmente usado para CD203c que já é expresso em células em repouso e seu aumento após a estimulação alergênica é unimodal-Fig. 2.
Em pacientes alérgicos, a ativação do basofil induzida pelo alergênio normalmente resulta em uma curva dose-resposta em forma de sino, com concentrações crescentes do alergênio (geralmente 5-6 log de diferença) levando a um aumento progressivo na expressão dos marcadores de ativação do basofil até atingir um platô-Fig. 3,